在细胞复苏过程中


，有多次复苏失败
，最终在查阅了相关技术积累了足够的复苏技能后复苏成功
，现将细胞复苏的操作程序和注意事项总结如下
，望能为实验人提供些参考


。

材料
1.常规细胞培养仪器设备、恒温水浴振荡器
。
2.培养液（DMEM）胎牛血清（CBS）二甲基亚砜（DMSO）。

操作程序
1.细胞实验室进行常规消毒，紫外照射40min以上

。
2.培养液（DMEM）
、0.25％胰蛋白酶（Trypsin）恒温水浴箱370C预热20min
，备用

。
3.二甲基亚砜（DMSO)在4度冰箱中冷藏30min，备用
。
4.从液氮保存罐中取出冻存管
，立即放入40度水浴中，快速摇晃

，直至冻存液完全融化


。
5.将细胞悬液移入15ml离心管
，缓慢加入4ml培养液
，离心（1000r/min，5min）
。
6.用培养液悬液混悬沉淀细胞

，调整细胞浓度
，放培养箱中培养
。
7.记录复苏日期。

注意事项
1. 取细胞的过程中注意带好防冻手套


，护目镜
。此项尤为重要

，细胞冻存管可能漏入液氮
，解冻时冻存管中的气温急剧上升
，可导致爆炸
。
2. 冻存液的问题





：冻存液的配置已是常识

，在这里不作详述，但二甲基亚砜（DMSO）对细胞不是完全无毒副作用

，在常温下
，二甲基亚砜对细胞的毒副作较大，因此



，必须在1-2min内使冻存液完全融化
。如果复苏温度太慢

，会造成细胞的损伤，二甲基亚砜（DMSO）最好选择进口产品。
3. 离心前须加入少量培养液
。细胞解冻后二甲基亚砜浓度较高，注意加入少量培养液可稀释其浓度
，以减少对细胞的损伤

。
4. 离心问题
：目前主要有两种见解。一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养
，第二天换液
。因为离心的目的是两个


，去除DMSO，去除死细胞，这个是标准流程
，但对一般人来说，把握不好离心转速和时间
，转的不够活细胞沉底的少




，细胞就全被扔掉了
，转过了活细胞会受压过大
，死亡



。此外在操作过程中容易污染
，所以不推荐





。另一种说法为细胞悬液中含有二甲基亚砜（DMSO）

，DMSO对细胞有一定的毒副作用
，所以须将离心后的液体前倒净


，且一定倒干净
。我在试验中按照常规的离心分装的方法进行复苏
，结果无异常
。
5. 细胞贴壁少的问题
：教科书中说明冻存细胞解冻时1ml细胞液要加10ml－15m培养液








，而在我的试验中的经验总结为培养基越少细胞越容易贴附
。
6. 复苏细胞分装的问题：试验中我的经验总结为复苏1管细胞一般可分装到1-2只培养瓶中，分装过多
，细胞浓度过低

，不利于细胞的贴壁
。
7. 加培养基的量放入问题：这个量的多少的把握主要涉及到的问题是DMSO的浓度
，从如果你加培养基的太少，那么DMSO的浓度就会比较大，就会影响细胞生长
，从以前的资料来看
，DMSO的浓度在小于0.5%的时候对一般细胞没有什么影响
，还有一个说法是1％

。所以如果你的冻存液的浓度是10％DMSO的话那么加10ml以上的培养基就恰好稀释到了无害浓度。