小鼠的趋化蛋白12定量分析酶联免疫检测试剂盒
本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的CXCL12浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系EBET易博。
CXCL12简介:
CXCL12,也叫SDF-1,属于CXC趋化因子家庭。由位于10号染色体的的CXCL12基因编码。有两种亚型SDF-1α和SDF-1β, SDF-1α是一个89个氨基酸的多肽,SDF-1β与SDF-1α相比,序列相同,只在C末端多了4个残基。SDF-1α是一个高度保守的蛋白,在人和小鼠间有99%的同源性。
SDF-1由骨髓基质细胞表达,在包括心、肝、脑、肾、骨骼肌和淋巴器官等许多器官都存在。
SDF-1作为一个高效的淋巴细胞趋化因子,能直接诱导和活化淋巴细胞在LPS、TNF和细胞因子等的免疫刺激作出应答,SDF-1作为单核细胞有效的化学诱导剂,能刺激B细胞增殖。SDF-1似乎在淋巴细胞和造血细胞的运输和归巢中有一定的作用。SDF-1已证明在肿瘤发生的过程中有重要的作用,包括刺激肿瘤细胞的生长、恶化、促进肿瘤血管增生、肿瘤转移等生理过程均有刺激作用。
检测原理:
本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中CXCL12的浓度。CXCL12捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的CXCL12会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗人CXCL12抗体后,抗人CXCL12抗体与CXCL12接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在CXCL12将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,CXCL12浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中CXCL12浓度。
小鼠CXCL12定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:
组分 | 规格(96T/48T) |
小鼠CXCL12预包被板 | 12条/6条 |
样本分析缓冲液 | 5ml/3ml |
5×标准品稀释液 | 10ml/5ml |
小鼠CXCL12标准品 | 4支/2支(冻干) |
小鼠CXCL12生物素化抗体 | 10ml/5ml |
亲和素连接的HRP酶 | 10ml/5ml |
浓缩洗涤液 20× | 30ml/15ml |
TMB底物 | 10ml/5 ml |
中止液 | 5ml/3 ml |
封板胶纸 | 3/2张 |
说明书 | 1份 |
标本收集:
1.标本的收集请按下列流程进行操作;
A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;
B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;
C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集若待测样本不能及时检测,
D.标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。
2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;
3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。
4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。
注:小鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。
注意事项:
1.试剂盒请保存在2~8℃。
2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。
3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。
4.底物请勿接触氧化剂和金属。
5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。
6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。
7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。
8.室温反应,请严格控制在25~28℃。
9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。
10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。
11.加样过程中避免气泡的产生。
12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。
检测前准备工作:
1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。
2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。
3.如有5X标准品稀释液,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)。
4.标准品: 按标签复溶体积加入1X标准品稀释液复溶使使CXCL12终浓度达到3000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为3000 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)
洗涤方法:
自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。
实验过程需自备的材料:
1.不同规格的加样枪及相应的枪头;
2.酶标仪;
3.自动洗板机;
4.去离子水或双蒸水;
操作步骤:
1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。
2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。
3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育120分钟。如果是血清血浆样本,不同样本稀释比例不一样,一般范围在1~10倍,如无明确范围,建议从2倍开始,加样稀释说明如下:每孔先加样本分析缓冲液50ul,再加用1×标准品稀释液稀释1倍后的样本,加样量为50ul。
4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
5.加入生物素化抗体工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育60分钟。
6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。
8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。
10.加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。
结果判断:
1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。
2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。
3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。
4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。
典型数值和参考曲线
浓度pg/ml | 典型OD值1 | 典型OD值2 | OD平均值 |
0 | 0.1224 | 0.1281 | 0.12525 |
93.75 | 0.2942 | 0.3024 | 0.2983 |
187.5 | 0.4553 | 0.4296 | 0.44245 |
375 | 0.7754 | 0.7318 | 0.7536 |
750 | 1.018 | 1.0373 | 1.02765 |
1500 | 1.5371 | 1.5453 | 1.5412 |
3000 | 2.1963 | 1.9857 | 2.091 |
小鼠CXCL12 参考标准曲线
注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。
灵敏度,特异性和重复性:
1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为31.6pg/ml。
2.特异性:与人和鼠的IP-10/CRG-2均无交叉反应性,能识别小鼠的SDF-1α。
3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.
参考文献:
1. Abi-Younes, S. (2000) Circ. Res. 86(2):131.
2. Sapede, D. et al., 2005, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 102: 1714-1718.
3. Delgado, M.B. et al., 2001, Eur. J. Immunol. 31: 699-707.
4. Bluel, C. et al. (1996) J. Exp. Med. 184:1101.
5. Crump, M.P. et al. (1997) EMBO J. 16:6996.
6. Bbalabanian, K. et al., 2005, J. Biol. Chem. 280: 35760-35766.
7. Vila-Coro, A.J. et al. (1999) FASEB J. 13:1699.
8. Oberlin, E. et al. (1996) Nature 382:833.
9. Orimo, A. et al., 2005, Cell. 121: 335-348.
10. Kryczek, I. et al., 2007, Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 292: C987-995.