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人的正五聚蛋白-3ELISA试剂盒Human Pentraxin 3/TSG-14 ELISA KIT
货号 :HH-115
价格 :¥3800.00
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正五聚蛋白-3 (Pentraxin 3)定量分析

酶联免疫检测试剂盒

本试剂盒仅供科研使用 。用于体外定量检测人血清、血浆或细胞培养上清液中的正五聚蛋白-3度 。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整 。如有产品包装破损或质量投拆 ,请在收到货一个月之内联系EBET易博      。

 

正五聚蛋白-3简介 :

正五聚蛋白-3(PTX3),也叫肿瘤坏死因子诱导蛋白5或肿瘤坏死因子刺激基因14(TSG-14) ,属于正五超家族蛋白中的一员,人的正五聚蛋白-3是一个45kDa的糖蛋白 。 巨噬细胞,中性粒细胞 ,骨髓来源的树突状细胞  ,卵巢粒细胞  ,内皮细胞,成纤维细胞   ,脂肪细胞,肾小球膜系细胞   ,滑液细胞    ,平滑肌细胞,泡状上皮细胞及神经胶质细胞等细胞均可产生正五聚蛋白-3 。

正五聚蛋白-3是一个急性反应时相蛋白  ,人和小鼠在炎症和感染状态下  ,血清中的正五聚蛋白-3迅速上升。在动脉粥样硬化患者的血液中   ,正五聚蛋白-3会大量出现  ,在心肌梗死患者血液中 ,正五聚蛋白-3含量会明显升高 。正五聚蛋白-3在免疫反应的调控中有双重调节作用,结合不能移动的正五聚蛋白-3通过C末端的正五聚蛋白结构域与补体组分C1q结合,触发经典的补体反应  。另一方面,自由移动的正五聚蛋白-3抑制经典的补体反应。正五聚蛋白-3可能俱有像调理素类似的功能,通过与特定的病毒            ,真菌及细菌成分相互作用,保护机体免受感染  。最后,正五聚蛋白-3可能在血管生成的过程中起重要作用,正五聚蛋白-3N端能与碱性成纤维生长因子结合 ,从而抑制碱性成纤维生长因子依赖型的血管再生。

 

检测原理:

本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中PENTRAXIN 3 的浓度。PENTRAXIN 3 捕获抗体已预包被于酶标板上   ,当加入标本或参考品时 ,其中的PENTRAXIN 3 会与捕获抗体结合 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗人PENTRAXIN 3 抗体后 ,抗人PENTRAXIN 3 抗体与PENTRAXIN 3 接合 ,形成夹心的免疫复合物 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合 ,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。最后加入显色剂  ,若样本中存在PENTRAXIN 3 将会形成免疫复合物 ,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质    ,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值    ,PENTRAXIN 3 浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线 ,对照未知样本中OD值,即可算出标本中PENTRAXIN 3 浓度。

 

PENTRAXIN 3量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

组分

规格(96T/48T)

Pentraxin 3预包被板

12条/6

样本分析缓冲液

5ml/3ml

标准品稀释液

10ml/5ml

Pentraxin 3标准品

2/1支(冻干)

Pentraxin 3生物素化抗体

10ml/5ml

亲和素连接的HRP酶

10ml/5ml

浓缩洗涤液 20×

30ml/15ml

TMB底物

10ml/5ml

中止液

5ml/3ml

封板胶纸

3/2

说明书

1

标本收集:

1.标本的收集请按下列流程进行操作 ;

A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可     ;

B.血清标本应是自然凝固后   ,取上清,避免在冰箱中凝固血液 ;

C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集

D.若待测样本不能及时检测 ,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融 。

2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂 ;

3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除 。

4.请勿使用溶血 ,高血脂或污染的标本检测 ,否则结果将不准确。

注:人血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测 。

 

注意事项:

1.试剂盒请保存在28℃  。

2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

3.标准品复溶加样后      ,剩余部份请丢弃 。

4.底物请勿接触氧化剂和金属。

5.加样时,请及时更换枪头    ,避免交叉污染     。

6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要  ,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

8.室温反应 ,请严格控制在25~28℃ 。

9.洗涤过程是至关重要的 ,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大 。

10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

11.加样过程中避免气泡的产生。

12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长 。

 

检测前准备工作:

1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟 ;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

3. 如有5×标准品稀释液用双蒸水或去离子水稀释(1份加4份水)。

4.标准品:按标签复溶体积用标准品稀释液复溶使PENTRAXIN 3终浓度达到14ng/ml ,室温反应    ,请严格控制在25~28℃  ,静置15~20分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解 ,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为14 ng/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

图片2.png 

洗涤方法:

自动洗板机或人工洗板 :每孔洗涤液为300ul    ,注入与吸出间隔15-30秒。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

 

实验过程需自备的材料:

1.不同规格的加样枪及相应的枪头   ;   

2.酶标仪  ;

3.自动洗板机  ;                    

4.去离子水或双蒸水;

 

操作步骤:

1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数 ,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封 ,保存于4℃  。

2.建议设置本底较正孔 ,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液 。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中 ,用封板胶纸封住反应孔  ,室温(25-28℃)孵育120分钟 。对于血清或血浆标本 ,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本 ,如稀释量大    ,请将样本与样本分析缓冲液等量加入  ,不足部分用标准品稀释液补充至100ul。      

4.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

5.加入生物素化抗体工作液(100ul/) 。用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育60分钟  。   

6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干  。

7.加入亲和素连接的HRP酶(100ul/)     。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

8.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干 。

9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值 。

 

结果判断:

1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效     ,复孔的值平均后可作为测量值。

2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值 。

3.手工绘制标准曲线   。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度 。

4.若标本OD值高于标准曲线上限  ,应适当稀释后重测   ,计算浓度时应乘以稀释倍数  。

典型数值和参考曲线

浓度ng/ml

典型OD1

典型OD2

OD平均值

0

0.099

0.091

0.095

0.4375

0.266

0.251

0.2585

0.875

0.449

0.431

0.44

1.75

0.676

0.648

0.662

3.5

1.015

0.957

0.986

7

1.538

1.454

1.496

14

2.221

2.106

2.1635

PENTRAXIN 3参考标准曲线

图片1.png 

注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量 。

 

灵敏度 ,特异性和重复性:

1.灵敏度 :多次重复结果表明,最小检出量为84pg/ml    。

2.特异性:与人的Pentraxin 2、CRP  无交叉反应性  ,与小鼠的Pentraxin 2、Pentraxin 3无交叉反应性。

3.重复性    :板内,板间变异系数均<10%.

 

参考文献:

1. Camozzi, M. et al. (2005) Arteriosescler. Thromb. Vasc. Biol. 25:1837.

2. Introna, M. et al. (1996) Blood 87:1862.

3. Baruah, P. et al. (2006) J. Leukoc. Biol. 80:87.

4. Garlanda, C. et al. (2002) Nature 420:182.

5. Jaillo n, S. et al. (2007) J. Exp. Med. 204:793.

6. Wisniewski, H. and J. Vilcek (2004) Cytokine Growth Factor Rev. 15:129.


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